banner

Новости

Nov 04, 2023

Глубокая визуальная протеомика определяет единый

Природная биотехнология, том 40, страницы 1231–1240 (2022 г.) Процитировать эту статью

56 тысяч доступов

57 цитат

539 Альтметрика

Подробности о метриках

Несмотря на наличие методов пространственной протеомики, основанных на визуализации и масс-спектрометрии, ключевой проблемой остается соединение изображений с измерениями содержания белка с разрешением в одной клетке. Здесь мы представляем глубокую визуальную протеомику (DVP), которая сочетает в себе анализ изображений клеточных фенотипов на основе искусственного интеллекта с автоматизированной лазерной микродиссекцией одной клетки или одного ядра и масс-спектрометрией сверхвысокой чувствительности. DVP связывает изобилие белков со сложными клеточными или субклеточными фенотипами, сохраняя при этом пространственный контекст. Индивидуально вырезая ядра из клеточной культуры, мы классифицировали различные состояния клеток с протеомными профилями, определяемыми известными и неохарактеризованными белками. В заархивированной ткани первичной меланомы DVP выявил пространственно разрешенные изменения протеома при переходе нормальных меланоцитов в полностью инвазивную меланому, выявив пути, которые изменяются пространственно по мере прогрессирования рака, такие как нарушение регуляции сплайсинга мРНК при метастатическом вертикальном росте, что совпадает со снижением передачи сигналов интерферона и презентация антигена. Способность DVP сохранять точную пространственную протеомную информацию в контексте ткани имеет значение для молекулярного профилирования клинических образцов.

Универсальность, разрешение и мультимодальный характер современной микроскопии позволяют получать все более подробные изображения неоднородности отдельных клеток и организации тканей1. В настоящее время обычно целью является заранее определенное подмножество белков, что далеко от фактической сложности протеома. Воспользовавшись существенно возросшей чувствительностью технологии, основанной на масс-спектрометрии (МС), мы решили дать возможность анализировать протеомы в их нативном, субклеточном контексте, чтобы изучить их вклад в здоровье и болезни. Мы объединили визуализацию с субмикронным разрешением, анализ изображений для фенотипирования отдельных клеток на основе искусственного интеллекта (ИИ) и изоляцию со сверхчувствительным рабочим процессом протеомики2 (рис. 1). Ключевыми проблемами оказались точное определение границ отдельных клеток и классов клеток, а также перенос автоматически определенных функций в протеомные образцы, готовые для анализа. С этой целью мы представляем программное обеспечение «BIAS» (Программное обеспечение для анализа биологических изображений), которое координирует работу сканирующих и лазерных микродиссекционных (LMD) микроскопов. Это органично сочетает в себе богатую данными визуализацию клеточных культур или тканей из архивных биобанков (фиксированных в формалине и залитых в парафин (FFPE)) с сегментацией клеток на основе глубокого обучения и идентификацией типов и состояний клеток на основе машинного обучения. Представляющие интерес клеточные или субклеточные объекты выбираются ИИ самостоятельно или после инструкций перед тем, как они подвергаются автоматическому LMD и протеомному профилированию. Данные, полученные с помощью DVP, можно использовать для обнаружения сигнатур белков, что дает молекулярное представление об вариациях протеома на фенотипическом уровне, сохраняя при этом полную пространственную информацию.

DVP сочетает в себе визуализацию высокого разрешения, анализ изображений под управлением искусственного интеллекта для классификации и изоляции отдельных клеток со сверхчувствительным рабочим процессом протеомики2. DVP связывает богатые данными изображения клеточной культуры или архивных тканей биобанка пациента с сегментацией клеток на основе глубокого обучения и идентификацией типов и состояний клеток на основе машинного обучения. (Не)контролируемые ИИ клеточные или субклеточные объекты, представляющие интерес, подвергаются автоматическому протеомному профилированию на основе LMD и MS. Последующий анализ данных биоинформатики позволяет осуществлять интеллектуальный анализ данных для обнаружения сигнатур белков, обеспечивая молекулярное понимание изменений протеома в состояниях здоровья и заболеваний на уровне отдельных клеток. tSNE, t-распределенное стохастическое вложение соседей.

Аспекты рабочего процесса DVP, связанные с микроскопией, основаны на визуализации всего предметного стекла с высоким разрешением, машинном обучении (ML) и глубоком обучении (DL) для анализа изображений.

 0.96). The lower correlation of normal cells and cancer cells reflected disease-specific and cell-type-specific proteome changes (Pearson r = 0.8; Fig. 4d,e and Supplementary Table 6). Acinar cell markers in the carcinoma were significantly downregulated, consistent with previous reports25. DVP allowed us to discover upregulation of interferon response proteins (for example, MX1 and HLA-A; Supplementary Table 6) and the proto-oncogene SRC, both actionable therapeutic targets26 (Fig. 4e). We validated the proteomic findings using IHC analysis of significantly enriched proteins in either normal-appearing or cancererous tissue. This resulted in the selection of CNN1, SRC, CK5 and FASN (Fig. 4f), which confirmed our proteomic results, demonstrated the absence of contamination and supported the specificity of our DVP approach./p> 700 in a total m/z range of 100–1.700 by synchronizing quadrupole switching events with the precursor elution profile from the TIMS device. The collision energy was lowered linearly as a function of increasing mobility starting from 59 eV at 1/K0 = 1.6 Vs cm−2 to 20 eV at 1/K0 = 0.6 Vs cm−2. Singly charged precursor ions were excluded with a polygon filter (otof control, Bruker Daltonik). Precursors for MS/MS were picked at an intensity threshold of 1.000 arbitrary units (a.u.) and re-sequenced until reaching a ‘target value’ of 20.000 a.u., taking into account a dynamic exclusion of 40-second elution. For data-independent analysis, we made use of the correlation of ion mobility with m/z and synchronized the elution of precursors from each ion mobility scan with the quadrupole isolation window. The collision energy was ramped linearly as a function of the ion mobility from 59 eV at 1/K0 = 1.6 Vs cm−2 to 20 eV at 1/K0 = 0.6 Vs cm−2. We used the ddaPASEF method for library generation./p>

ДЕЛИТЬСЯ